Zespół LBPiA EPN:

dr Waldemar Kazimierczak
adiunkt badawczy
e-mail: waldemar.kazimierczak@kul.pl
tel. +48 (81) 454 56 25, 26
ORCID: http://orcid.org/0000-0001-8576-4701

 

dr Ewa Sajnaga

asystent badawczy
e-mail: esajnaga@kul.pl
tel. +48 (81) 454 56 26
ORCID: 0000-0003-4179-1948
 
dr Marcin Skowronek
adiunkt badawczy
e-mail: marcin.skowronek@kul.pl
tel. +48 (81) 454 56 00
ORCID: 0000-0003-2069-0347
 
dr Magdalena Lis
asystent badawczy
e-mail: magdalena.lis@kul.pl
tel. +48 (81) 454 56 25
ORCID: 0000-0001-8566-2406
 
 

W Laboratorium Biokontroli, Produkcji i Aplikacji EPN prowadzone są badania dotyczące biologicznych metod ograniczania liczebności szkodliwych gatunków bezkręgowców, a szczególnie zastosowania entomopatogenicznych nicieni w biokontroli oraz opracowania przemysłowych metod produkcji biopreparatów opartych na entomopatogenicznych nicieniach.

 

 

Entomopatogeniczne nicienie to bardzo interesująca grupa organizmów z uwagi na specyficzne cechy biologiczne. Posiadają w swoim rozwoju jedno wolnożyjące w glebie stadium - larwy inwazyjne, które wykształciły zdolność aktywnego poszukiwania w środowisku żywiciela. Zabijają owady szybko, w czasie około 48 godzin. Entomopatogeniczne nicienie są bezpieczne dla kręgowców, roślin i licznych bezkręgowców. Po introdukcji do środowiska larwy inwazyjne mogą utrzymywać się w nim przez dłuższy czas, bez konieczności ponawiania zabiegu.

 

Biopreparaty zawierające nicienie entomopatogenne są wykorzystywane do zwalczania szkodliwych owadów w krajach Unii Europejskiej, USA i Australii. Jednak należy podkreślić, że metody biologiczne powinny być dostosowane do konkretnych warunków ekologicznych i agrotechnicznych. Z tego też względu nie jest możliwe pełne wykorzystanie metod wypracowanych w innych krajach i w innych warunkach. Warto też zaznaczyć, ze bezpieczniejsze dla środowiska jest wykorzystywanie organizmów rodzimych, a nie pochodzących z odległych rejonów lub modyfikowanych genetycznie. W przypadku introdukcji istnieje potencjalne niebezpieczeństwo zagrożenia ekologicznego.

 

 

Aparatura:

Laboratorium jest wyposażone w nowoczesną aparaturę do identyfikacji nicieni (metodami morfologicznymi i morfometrycznymi, genetycznymi i molekularnymi), do badań biologii i ekologii EPN.

 

Mikroskopy:

  • mikroskopy optyczne badawcze: LEICA 5500B z kontrastem DIC oraz z kamerą cyfrową o wysokiej rozdzielczości DF500 i DFC 290 HD i oprogramowaniem do analizy obrazu, OLYMPUS IX70, BH2, BX50, z kamerą cyfrową Olympus i kontrastem interferencyjno-różnicowym;
  • mikroskopy steroskopowe: LEICA 205C, LEICA 125A, OLYMPUS SZX-10, ZEISS Stemi 11 i inne.

 

Aparatura do badań molekularnych:

  • aparat do pomiaru Real-Time PCR CFX96,
  • termocykler C 1000 Thermal Cycler With 48/48 Dual Fast Reaction Module-Gradient,
  • system do dokumentacji żeli GelDocXR PLUS system, PC 220 V,
  • aparat do elektroforezy Wide Mini-Sub Cell GT,
  • wirówki Eppendorff: MiniSpin Plus, Centrifuge 5804 R, Centrifuge 54 17 R,
  • Thermomixer 5355-Comfort,
  • komory laminarne ESCO PCR Vertical, Misonix VLF i POLON,
  • spektrofotometr Pico Drop,
  • homogenizator TissueLyser II.

 

Aparatura do izolacji, hodowli oraz badań biologii i ekologii EPN:

  • bioreaktory NewBrunswick 415 i prototypowy do testów,
  • inkubatory o różnej pojemności roboczej, programowane i sterowane cyfrowo, marki Memmert,
  • komora inkubacyjna Memmert,
  • kriozamrażarki (New Brunswick Scientific),
  • zamrażarki TYP ZLN 180,
  • chłodnia do przechowywania szczepów patogenów,
  • pokój termostatowany,
  • pomieszczenie do hodowli owadów testowych.

 

Laboratorium Biokontroli, Produkcji i Aplikacji EPN posiada wydzieloną i zabezpieczoną działkę do prowadzenia badań efektywności opracowanych biopreparatów w warunkach półnaturalnych.

 

Aktualnie realizowane granty/projekty:

  • Grant Miniatura 4 (dr W. Kazimierczak) pt. Izolacja rozrodcza wśród nicieni z rodzaju Steinernema.

 

Publikacje:

  • Sajnaga, E., Skowronek, M., Kalwasińska, A., Kazimierczak, W., Ferenc, K., Lis, M., Wiater, A., 2021. Nanopore-Sequencing Characterization of the Gut Microbiota of Melolontha melolontha Larvae: Contribution to Protection against Entomopathogenic Nematodes. Pathogens 10 (4): e396, doi: 10.3390/pathogens10040396,
  • Łupina, K., Kowalczyk, D., Kazimierczak, W., 2021. Gum arabic/gelatin and water-soluble soy polysaccharide/gelatin blend films as carriers of astaxanthin - a comparative study of the kinetics of release and antioxidant properties. Polymers 13 (7): e1062, doi: 10.3390/polym13071062,
  • Skrzypek, T., Kazimierczak, W., Zięba, E., Olszewski, J., Ferenc, K., Zabielski, R., 2021. How to get a proper 2D and 3D image? In: Zabielski, R., Skrzypek, T. (eds.) Atlas of the Pig Gut. Research and Techniques form Birth to Adulthood. Academic Press,
  • Lis, M., Sajnaga, E., Skowronek, M., Wiater, A., Rachwał, K., Kazimierczak, W., 2021. Steinernema sandneri n. sp. (Rhabditida: Steinernematidae), a new entomopathogenic nematode from Poland. Journal of Nematology 53: e2021-51, doi: 10.21307/jofnem-2021-051,
  • Rachwał, K., Gustaw, K., Kazimierczak, W., Waśko, A., 2021. Is soil management system really important? Comparison of microbial community diversity and structure in soils managed under organic and conventional regimes with some view on soil properties. PLoS ONE 16 (9): e0256969, doi: 10.1371/journal.pone.0256969,
  • Łupina, K, Kowalczyk, D., Lis, M., Raszkowska-Kaczor, A., Drozłowska, E., 2022. Controlled release of water-soluble astaxanthin from carboxymethyl cellulose/gelatin and octenyl succinic anhydride starch/gelatin blend films. Food Hydrocolloids 123 (10): e107179, doi: 10.1016/j.foodhyd.2021.107179.
Autor: Emil Zięba
Ostatnia aktualizacja: 06.09.2022, godz. 12:22 - Anita Marszelewska