PREZENTACJA INSTYTUTU

 

Instytut Nauk Biologicznych został powołany decyzją Senatu KUL 01.10.2019 r. (wcześniej Instytut Biotechnologii). W skład Instytutu wchodzą 4 Katedry: Katedra Biologii i Biotechnologii Mikroorganizmów, Katedra Biologii Molekularnej, Katedra Fizjologii i Biotechnologii Roślin, Katedra Fizjologii Zwierząt i Toksykologii.

Do zadań Instytutu należy prowadzenie działalności naukowo-badawczej
w zakresie dyscypliny naukowej jaką jest biotechnologia. Wyniki badań są prezentowane w postaci wystąpień ustnych i posterowych na licznych konferencjach krajowych i zagranicznych oraz publikowane w czasopismach z ISI Master Journal List i innych, spoza tej listy. Od 2016 roku Instytut współtworzy Lubelski klaster biotechnologiczny.

 

OFERTA

Usługi badawcze:

 

1.Realizacja zleconych kompleksowych prac badawczych oceny potencjału toksycznego substancji biologicznie czynnych wprowadzanych przez przedsiębiorstwa z sektora chemicznego, farmaceutycznego, kosmetologii.

2.Monitoring toksyczności wód i gleb oraz skuteczności usuwania zanieczyszczeń po zastosowanych procedurach oczyszczania w inżynierii środowiskowej

3.Sporządzanie ekspertyz przyrodniczych na potrzeby instytucji zarządzających zasobami przyrodniczymi (np. parki narodowe, parki krajobrazowe, obszary chronionego krajobrazu) oraz podmiotów, których działalność wymaga uzyskania ekspertyz środowiskowych (inwestycje związane z rozwojem infrastruktury).

4.Analiza mikrobiologiczna i molekularna:

• sterylizacja pożywek mikrobiologicznych, szkła i drobnego sprzętu laboratoryjnego,
• dobór metody i optymalizacja izolacji DNA z próbek środowiskowych,
• pomiar czystości i ilości wyizolowanego DNA,
• przeprowadzenie reakcji amplifikacji (PCR),
• określanie ogólnej liczebności bakterii w próbkach środowiskowych (hodowle płytkowe),
• identyfikacja szczepu na podstawie genu 16S rRNA.

5.Analiza molekularna prób środowiskowych pod kątem mikrobiomu bakteryjnego.

6.Analizy biologiczne:

• wyznaczanie aktywności respiracyjnej w materiale środowiskowym (technika chromatografii gazowej),
• wyznaczanie aktywności metanogenicznej i metanotroficznej (technika chromatografii gazowej),
• wyznaczanie aktywności enzymatycznej (dehydrogenazowej – technika spektrofotometryczna),
• analiza próbek gazowych pod względem zawartości gazów szklarniowych (CO₂, N₂O, CH₄),
• analiza aminokwasów w materiale biologicznym (np. płyn pohodowlany, biomasa mikroorganizmów) metoda GCMS z zastosowaniem zastawu EZ:faast),
• analiza produkcji kwasu indoilo-3-octowego (IAA) przez mikroorganizmy (metoda spektrofotometryczna).

7.Analizy fizykochemiczne - kompleksowa analiza parametrów fizykochemicznych gleb i wód, obejmująca wyznaczenie:

• wilgotności (próbki stałe),
• odczynu (pH),
• przewodnictwa elektrolitycznego (EC) – pośrednio zasolenia,
• potencjału oksydoredukcyjnego (Eh) – metody potencjometryczne,
• zawartości całkowitych form węgla (TC, IC), azotu i fosforu (TN, TP) detekcja w podczerwieni oraz metody kolorymetryczne,
• zawartości biogennych form azotu (NO₃-N; NH₄-N; NO₂-N) i fosforu (PO₄-P),
• poziomu jonów (Cl^-; S^2-; SO₄^2-) – metody kolorymetryczne,
• zawartości mikro- i makroelementów – technika AAS (wraz z przygotowaniem prób do analiz – mineralizacja prób stałych).

8.Analiza aktywności układu antyoksydacyjnego u roślin wyższych.

9.Dobór warunków do hodowli kultur roślinnych i glonów in vitro.

10.Techniki z zastosowaniem markerów DNA (RAPD, ISSR).

11.Badanie aktywności przeciwgrzybiczych i przeciwbakteryjnych dostarczonych substancji:

• wyznaczanie wartości MIC, MFC, BIC, MBIC,
• określanie wpływu na biofilm,
• badanie wpływu związków na kluczowe dla wirulencji geny (Real-Time PCR),
• określanie mechanizmu działania.

   12.Badanie aktywności przeciwnowotworowej w wykorzystaniem:

• hodowli komórkowych,
• cytometrii przepływowej,
• analizy in silico.

13.Oczyszczanie białek z zastosowaniem różnych technik chromatograficznych.

14.Badanie mechanizmów regulacji aktywności białek enzymatycznych (interakcji enzym/inhibitor, enzym/substrat, inhibitor/substrat).

15.Nadekspresja i oczyszczanie natywnych, rekombinowanych białek ekspresowanych E. coli lub S. cerevisiae.

16.Określanie aktywności antyproliferacyjnej i testy cytotoksyczności w kulturach komórkowych.

17.Określanie aktywności antybakteryjnej i antygrzybiczej substancji pochodzenia naturalnego i syntetycznych.

18.Badanie czystości mikrobiologicznej produktów leczniczych i wyrobów medycznych w trakcie badań rozwojowych.

19.Badanie czystości mikrobiologicznej suplementów diety, produktów spożywczych i kosmetycznych do dopuszczenia do obrotu oraz badań rozwojowych.

20.Badanie lekooporności drobnoustrojów.

21.Badanie właściwości antagonistycznych drobnoustrojów.

22.Sprawdzanie właściwości przeciwdrobnoustrojowych różnych substancji.

23.Badanie właściwości probiotycznych, w tym m.in. wytwarzania kwasu mlekowego (L i D) i  kwasu octowego, profilu metabolizmu węglowodanów i in.

24.Izolacja z wybranego gatunku i identyfikacja nowych szczepów probiotycznych.

25.Izolacja ze środowiska i identyfikacja nowych szczepów symbiotycznych dla roślin bobowatych.

26.Charakterystyka biochemiczna drobnoustrojów do metryczki.